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抗（抑）菌试验
日期：2024-05-10 04:00
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摘要：
抗（抑）菌试验
2.1.8.1 目的
测定抗（抑）菌产品对**和**的抗（抑）菌作用。
常使用的方法有抑菌环试验、*小抑制浓度测定试验、滞 留 抑 菌 效 果 测 定 试 验、洗衣粉**效果测定试验、振荡烧瓶试验、浸渍试验与奎因试验，可视情况选用。
2.1.8.2 抑菌环试验
2.1.8.2.1 原理
利用抑菌剂不断溶解经琼脂扩散形成不同浓度梯度，以显示其抑菌作用。试验通过抑菌环大小以判断其是否具有抑菌能力。本试验适用于抑菌剂与溶出性抗（抑）菌产品的鉴定。
2.1.8.2.2 试验器材
(1)金黄色葡萄球菌 (ATCC 6538)、大肠杆菌(8099)、白色*** (ATCC 10231) 菌悬液(见2.1.1.2)及根据抑菌剂特定用途所用的其他菌悬液。
(2)抑菌剂载体 (5 mm 直径园形新华一号定性滤纸片，经压力蒸汽**处理后，置 120℃ 烤干2h，保存备用)。
(3)活菌培养计数所需器材(见2.1.1.3)。
(4)微量移液器(5μl～50μl，可调式)。
(5)游标卡尺。
(6)营养琼脂培养基、胰蛋白胨大豆琼脂培养基与沙堡琼脂培养基
2.1.8.2.3 操作程序
(1)抑菌片的制备:对液体抑菌剂，取无菌并干燥的滤纸片。每片滴加实际使用浓度抑菌剂溶液20μl，然后将滤纸片平放于清洁的无菌平皿内，开盖置温箱(37℃) 中烤干，或置室温下自然干燥后备用。
溶出性抗（抑）菌产品，可直接制成直径为 5mm，厚不超过 4mm圆片(块)，每 4 片(块) 一组。
(2)阴性对照样片的制备:取无菌干燥滤纸片，每片滴加无菌蒸馏水 20μl，干燥后备用。
溶出性抗（抑）菌产品的阴性对照样本，应取同种材质不含抑菌成份的样品，制成与试验组大小相同的样片(块)。
(3)试验菌的接种:用无菌棉拭子蘸取浓度为 5×105cfu/ml～5×106cfu/ml试验菌悬液，在营养琼脂培养基平板表面均匀涂抹3次。每涂抹1次，平板应转动 60°，*后将棉拭子绕平板边缘涂抹一周。盖好平皿，置室温干燥5min。
(4)抑菌剂样片贴放:每次试验贴放1个染菌平板，每个平板贴放4片试验样片，1 片阴性对照样片，共 5片。用无菌镊子取样片贴放于平板表面。各样片中心之间相距 25mm以上，与平板的周缘相距 15mm以上。贴放好后，用无菌镊子轻压样片，使其紧贴于平板表面。盖好平皿，置37℃温箱，培养16h～18h观察结果。用游标卡尺测量抑菌环的直径 (包括贴片) 并记录。试验重复3次。
测量抑菌环时，应选均匀而完全无菌生长的抑菌环进行。 测量其直径应以抑菌环外沿为界。
2.1.8.2.4 评价规定
(1)抑菌作用的判断:
抑菌环直径大于 7mm 者，判为有抑菌作用。
抑菌环直径小于或等于 7mm 者，判为无抑菌作用。
(2) 3 次重复试验均有抑菌作用结果者，判为合格。
(3)阴性对照组应无抑菌环产生。否则试验无效。
2.1.8.2.5 注意事项
(1)每次试验均应设置阴性对照，不可省略。在报告中亦必须将对照组的结果列出。
(2)接种用**悬液的浓度应符合要求。浓度过低，接种菌量少，抑菌环常因之增大; 浓度过高，接种量过多，抑菌环则可减小。
(3)应保持琼脂浓度的准确性，否则可影响抑菌环的大小。
(4)培养时间不得超过 18h。培养过久，部分**可恢复生长，抑菌环变小。
(5)抑菌环直径可受抑菌剂的量、抑菌性能和干湿度影响。故抑菌剂滤纸片应在试验当天制备。
2.1.8.3 *小抑菌浓度测定试验（琼脂稀释法）
2.1.8.3.1原理
本试验采用琼脂稀释法将不同浓度的抑菌剂混合溶解在琼脂培养基中，然后点种**，通过**的生长与否，确定抗（抑）菌物质抑制受试菌生长的*低浓度，即*小抑菌浓度(MinimalInhibitory Concentration，MIC)。本方法适用于不溶性抗（抑）菌产品。
2.1.8.3.2 试验器材
（1）菌株
金黄色葡萄球菌 ATCC 6538 ，大肠杆菌 8099或ATCC 11229。
可根据抑菌剂的用途，选择特定的菌株。
（2）水解酪蛋白琼脂培养基（MH），称取38gMH琼脂培养基，溶于1000ml水中，加热至沸腾溶解，然后121℃高压**15min，置45℃～50℃水浴备用，此培养基将用于对照试验。
（3）0.03mol/L磷酸盐缓冲液pH7.2。
（4）加样器（1μl～10μl）。
（5）45℃～50℃水浴恒温箱。
（6）吸管、试管、平皿。
（7）37℃培养箱。
2.1.8.3.3 操作步骤
（1）抗（抑）菌溶液的配制：以无菌操作取5ml或5g（固体研磨后）样品，放入45ml**磷酸缓冲液中，充分震荡溶解，配成10%的均匀分散的溶液或悬液。
（2）含**剂培养基配制：将已配成10%的抗（抑）菌溶液或悬液用PBS做对倍系列稀释成不同浓度的受试液，置45℃～50℃水浴恒温备用。
（3）双倍浓度培养基配制：称取76gMH琼脂培养基，溶于1000ml水中。加热至沸腾溶解。然后121℃压力蒸汽**15min，置45℃～50℃水浴备用。此培养基将用于稀释抗（抑）菌溶液或悬液。
（4）含抗（抑）菌液培养基的配制：分别取10ml系列稀释的**液加入平皿内。将在45℃～50℃水浴中的双倍MH琼脂培养基10ml，加入平皿内，边加边摇晃平板，使抗（抑）菌液和培养基充分混匀，待凝固后备用。
（5）用加样器取1μl～2μl（含菌量约为107cfu/ml）菌悬液点种于含抗（抑）菌液培养基的平皿，接种后所形成的菌液圈直径约5mm～8mm（每个点菌量约为104cfu）。
（6）以同样方法接种不含抗（抑）菌成分的MH琼脂平板，作为阳性对照。
（7）将接种后的平板放置35℃培养箱中，倒置培养18h～24h，观察结果。
2.1.8.3.4 评判规定
菌落生长被完全抑制的*低抗（抑）菌液浓度为该样品对受试菌的MIC。单一菌落生长可忽略不计。
2.1.8.3.5 注意事项
（1）接种时，应由低抗（抑）菌剂浓度向高浓度平板依次接种，*后接种对照平板。
（2）为了保证平板受热均匀，培养时平板堆放不得超过4个。
2.1.8.4 *小抑菌浓度测定试验（营养肉汤稀释法）
2.1.8.4.1原理
本试验将不同浓度的抑菌剂混合溶解于营养肉汤培养基中，然后接种**，通过**的生长与否，确定抗（抑）菌剂抑制受试菌生长的*低浓度，即*小抑菌浓度(MinimalInhibitory Concentration，MIC)。本方法式用于可溶性抑菌产品。
2.1.8.4.2 试验器材
（1）试验菌株：金黄色葡萄球菌 ATCC 6538 ，大肠杆菌 8099或ATCC 11229。
可根据抑菌剂的用途，选择特定的菌株。
（2）营养肉汤培养基，见附录A。
（3）稀释液，见附录A。
（4）吸管、试管
（5）37℃培养箱。
2.1.8.4.3 操作步骤
（1）按 2.1.1.2 所示方法制备的金黄色葡萄球菌、大肠杆菌悬液
（2）含**剂培养基配制：将抗（抑）菌溶液用蒸馏水做对倍系列稀释成不同浓度的受试液，取各稀释度受试液2.5ml加入到含2.5ml双倍浓度营养肉汤的试管中。
（3）取0.1ml含菌量约为108cfu/ml菌悬液接种于含抗（抑）菌剂的营养肉汤的试管中，作为试验组样本。
（4）以同样方法接种不含抗（抑）菌剂的营养肉汤的试管中，作为阳性对照组样本。
（5）取2支含营养肉汤的试管中，作为阴性对照组样本。
（6）将试验组样本、阳性对照组样本及阴性对照组样本放置37℃培养箱中，培养48h，观察结果。
（7）试验中应将试验用菌悬液进行活菌培养计数，其作用浓度应为5×105cfu/ml～5×106cfu/ml。
2.1.8.4.4 评判规定
当阳性对照管有**生长(混浊)，阴性对照管无菌生长(透明)，试验用菌悬液的作用浓度为5×105cfu/ml～5×106cfu/ml时，试验组无菌生长的*高稀释度所对应的抗（抑）菌剂浓度，为该样品对受试菌的MIC。
2.1.8.4.5 注意事项
接种时，应由低抗（抑）菌剂浓度向高浓度依次接种，
2.1.8.5 滞 留 抑 菌 效果 试 验
2.1.8.5.1 原 理
本试验通过模拟适合**生长、繁殖和可能产生感染的皮肤条件下，使用随机性、双盲的、配对比较的方法检测抗（抑）菌香皂和**沐浴露12h或24h的滞留抑菌效果。
2.1.8.5.2试验器材
(1) 试验产品: 试验品为25套按顺序编号的香皂样品。每套2块，一块为测试样品皂，另一块为不含抑菌剂的对照皂。
(2) 不含抑菌剂的洗发水 25瓶（200ml/瓶）
(3) 不含抑菌剂的香皂 25块
(4) 胰蛋白酶大豆肉汤培养基(TSB)
(5) 胰蛋白酶大豆琼脂培养基（TSA）
(6) 0.075mol/L的磷酸盐缓冲液
(7) 70%酒精
(8) 恒温箱
(9) 金属筒 （直径2.2cm、高度3cm）
(10) 一次性接种环（直径4mm）
(11) 小塑料碗（直径2.2cm，高2.5mm，）
(12) 胶带（Darapore，3M公司生产）
(13) 尼龙刮菌棒
(14) Triton-X 100 500ml
(15) 外用***软膏(例如:百多邦莫匹罗星软膏)
(16) 玻璃弯棒
(17) 羊血
(18) 金黄色葡萄球菌ATCC27217（此株金黄色葡萄球菌是一种低毒性、对青霉素敏感、对四环素有抗药性的色素株，曾用于许多试验研究，没有任何严重副作用）。
(19) 皮肤**剂
2.1.8.5.3 试验步骤
(1)调整阶段
试验开始前7d至14d，受试者使用不含抗（抑）菌成分的香皂、洗发水和沐浴液进行日常的洗手、洗澡。此阶段持续至少7d，但不超过14d。
(2)清洗阶段
清洗阶段共3d，受试者每天用抑菌皂清洗一侧前臂，用对照皂清洗另一侧前臂，清洗过程如下:
1）先清洗左臂，用流动水（水温应保持在35℃～37℃）打湿前臂内侧；
2）用香皂从手腕至臂肘上下摩擦15s；
3）用手在涂有香皂的手臂上上下摩擦泡沫45s；
4）用流动的清水冲洗前臂15s，不要搓擦；
5）用纸巾沾干前臂. 不要搓擦；
6）重复以上步骤清洗右臂；
7）按上面所描述的试验步骤每日清洗前臂3次，每次间隔至少一个小时，在*后一次清洗之后，需记录好时间，在12h之后，进行滞留效果检测。在第9次清洗前臂以后，受试者不能洗澡、淋浴或洗净前臂，直到试验结束。用品包的标签上注明洗哪只手臂。清洗前后的两块香皂的重量及受试者完成清洗的情况，须记录下来。
（3）试验阶段
清洗阶段的第四天(*后一次清洗后12h或24h)，将在受试者每只前臂上划出一个试验区，对试验区进行接种、封包和回收存活**，具体步骤如下:
1）将金黄色葡萄球菌（ATCC27217）连续转种3代，取第3代培养物接种于胰蛋白大豆肉汤培养基（TSB）中，在35℃±2℃的条件下培养20h±2h。然后用胰蛋白酶大豆肉汤适当稀释菌悬液，使菌悬液浓度约为108cfu/ml～109cfu/ml。
2）**接种:在受试者的每只前臂中间部位（不要在手腕和肘皱褶处），用带有印墨直径为3.0cm的玻璃量筒扣在皮肤上，划分出一个试验区。使用加样器取10μl上述菌悬液，接种于前臂试验区（菌落数为106cfu/试验区～107cfu/试验区），用一次性接种环，把接种物涂成一圆形，使其与试验区边缘应有4mm～5mm的距离。
3）封包:**接种后立即用小塑料碗扣于染菌区上面 ，再用胶带将小塑料碗固定在皮肤上，记录封包的时间。
4）回收存活**：接种后2h±5min对前臂上接种的区域进行取样。将金属筒放置于试验区中间部位，不要接触到盖有印墨的边缘。将1ml含0.1%triton-X100的0.075mol/L磷酸盐缓冲液吸移至金属筒内，用尼龙刮菌棒刮洗金属筒罩住区域内的皮肤60s，将筒内液体吸移至试管内，再加1ml含0.1%tritonX-100的0.075mol/L磷酸盐缓冲液，对该区域内的皮肤进行第2次刮洗30s，将第2次擦洗的液体，注入含第1次刮洗液体的试管中。
5）实验区试验后的**处理:一个实验区采样之后，需用70%的酒精对实验区进行**。然后对另一个实验区以同样方法进行采样，采样结束后，先用70%的酒精对实验区进行**，然后用皮肤**剂对两只前臂进行**处理，处理后清水冲洗，擦干，再涂少量的***软膏。
6）平皿接种与培养:对每一个取样进行平皿接种，以0.0375mol/L磷酸盐缓冲液对样品进行10倍系列稀释，选适当稀释度取0.1ml接种于2个含5%羊血的TSA平板表面，用玻璃弯棒涂匀，在35℃±2℃的培养箱中培养48h±4h，计数菌落数。
7）抑菌率的计算
抑菌率=[ （对照平均菌落数－试验平均菌落数）/ 对照平均菌落数] ×100%
2.1.8.5.4 判定标准
试验不得少于16人次，抑菌率≥50%，可判定该产品在规定的时间内有滞留抑菌作用。
2.1.8.5.5注意事项
（1）受试者录用标准
①年龄介于18岁至65岁的男性或女性；
②受试者应身体健康；
③前臂应完好无损且没有皮肤病及其它皮肤问题；
④同意在整个试验期间，避免使用抗（抑）菌洗液和乳膏、局部类固醇类药和全身或局部使用***，除非因为并发病症医生要求使用；
⑤同意在清洗阶段使用非**香皂或洗液洗澡和淋浴，但受试者不能清洗前臂。在第9次洗完前臂以后，不洗澡，淋浴或洗净前臂，直到试验结束。
（2）排除受试者的标准 如果受试者有下列情况之一，不能被录用参加试验
① 同时参加另外一个临床试验
② 在过去的14d中，参加过任何一种形式的关于清洁手或手臂的试验
③ 对香皂、去污剂、香水或青霉素过敏
④ 怀孕妇女
⑤ 诊断患有糖尿病、肝炎、艾滋病（HIV阳性）、器官移植者，
（3）其它试验限制
① 受试者不得使用其它清洁用品；
② 受试者应避免洗热水盆浴和游泳；
③ 受试者应避免接触未干的油漆、涂料或者其它溶剂；
④ 受试者应避免在手腕处和前臂上喷洒香水。
（4）在试验完成后的48h～72h内，需检查前臂上有无小**、水疱，隆起的红色痒疱。出现这些情况的受试者应尽快通知检验单位。
2.1.8.6洗衣粉抗（抑）菌效果鉴定方法8
2.1.8.6.1 原 理
本 方 法 通过 模 拟 洗 衣 机 的 洗 衣 过 程 ，检 测 抗 （抑）菌 洗 衣 粉（剂）的 抗 菌 作 用 。
2.1.8.6.2 试 验 器 材
（1） 试 验 菌 株
大 肠 杆 菌 A T C C 1 1 2 2 9，金 黄 色 葡 萄 球 菌 A T C C 6 5 3 8。
（2）培 养 基
营 养 琼 脂（ 琼 脂 含 量 为1.5%）
营养琼脂A：在营养琼脂中另加入1.5 %的琼脂。
TSA营养肉汤。
（3）牛 血 清 白 蛋 白（ 过 滤 除 菌）
（4）烷 基 酚 聚 氧 乙 烯 醚 （Tergitol ）
（5）碳 酸 钠
（6）标准 硬 水
（7）非 离 子 浸 湿 剂 ： 见 测 试 棉布 制 备 部 分
（8）冲 洗 溶 液
（9） 中 和 剂（ 经 中 和 剂 鉴 定 试 验 合 格 ）
（10） 吐 温80 ( 过 滤 除 菌 )
（11）去 离 子 水 或 蒸 馏 水灭 菌
(12)不锈钢转轴（由 一 条 直 径0.16cm 不 锈 钢 丝 制 成，如 图2-2）
俯 视 图 侧 面 图
图2-2 缠 绕 测 试 布 条 的 不 锈 钢 转 轴
（13）有 金 属 螺 盖 的 玻 璃 罐（ 容 积 为470 ml ，可 高 压 灭 菌 ， 并 可 放 入 转 轴 的 广 口罐），将 罐 口 覆 盖 牛 皮 纸 ，加 盖 ，于121*C灭 菌2 5 min 备 用。
（14）转 动 速 度 为45 r/ min～6 0 r/ min 的 滚 动 摇 床
（15）可 调 恒 温 水 浴 箱
（16）吸 管 ( 1ml， 5ml，和 10 ml)
（17）培 养 皿
（18）铺 有 滤 纸 的 玻 璃 培 养 皿。
（29）菌 种 保 存 管
（20）细 菌 培 养 箱
（21）涡 流 振 荡 器
（22）细 菌 比 浊 仪
（23）棉布（32支纱/cm×32支纱/cm平织棉布）
（24）别 针、镊 子、无 菌 手 套 、3mm～5 mm玻 璃 珠 、秒 表、载 体 布片2.5cm×3.75cm ，见 测 试棉布 准 备。
2.1.8.6.3实 验 准 备
（1）测 试棉布的制备
①非 离 子 浸 润 剂 的 制 备：取5g烷 基 酚 聚 氧 乙 烯 醚 ，5 g 碳 酸 钠 加 入 到1 L 去 离 子 水 中。
②洗 涤 液 的 制 备 ：1.5g 非 离 子 浸 润 剂 ，1.5g 碳 酸 钠 ，加 入 到3 L 去 离 子 水 中。
将 大 约3 0 0 g 测 试 棉 布 加 入3 L 洗 涤 溶 液 。 加 热 煮 沸 1h 。 取 出 棉 布 在 煮 沸 的去 离 子 水 中 清 洗 5 m i n 。 然 后 放 入 凉 去 离 子 水 中 5 min 。 以 去 除 残 留 的 浸 润剂 。 然 后 将棉布 晾 干。
（2）测 试 棉 布 和 转 动 支 架 的 准 备 ：取 处 理 过 的 棉 布，剪 成5 cm 宽 ，重 量 为15g *1 g的布 条，将 其 一 端 插 入 固 定 在 测 试 转 动 支 架 的 水 平 方 向 的 外 边，然 后 在 3 条 水 平 支 架间 以 足 够 的 张 力 缠 绕12个 整 圈 ，将 布 条 的 另 一 端 用 不 锈 钢 别 针 固 定 在 前 一 圈 布 条上 。* 后 以
121℃ 压 力 蒸 汽 灭 菌15 mi n ，备 用 。
（3） 细 菌 悬 液 的 制 备 ：取0. 5 ml营 养 肉 汤 冻 干 的 菌 种 溶 解，接 种于含10 ml 的 营 养 肉汤 的 试 管 ，于3 5 *C * 2 *C培 养2 4 h。 然 后， 振 荡 混 合 均 匀 。用10μl 接 种 环 在 营养 琼 脂 平 板 上 划 线 ，置 于35 *C * 2*C培 养2 4h。 然 后 ，从 平 板 上 挑 取 单 个 菌 落 种入 菌 种 保 藏 管 中 ，上 下 摇 动10次 ，吸 弃 多 余 液 体 ， 置－8 0 *C冰 箱 保 存。 试 验 前 ，从菌 种 保 藏 管 中 取 出 1粒 带 菌 小 颗 粒 放 入 营 养 琼 脂 斜 面 ，晃 动 斜 面 。 将 斜 面 至3 5℃培 养2 4 h 。 每 天 转 种1 次 ，连 续 传 3 代 。
第四天，用5 m l P B S洗脱斜面上的菌苔，取0.5 ml加入到含9.5 ml PBS的试管中，混匀，取1 ml～2ml加入含有20 ml营养琼脂B的细胞培养瓶中，晃动培养瓶使菌液覆盖整个琼脂表面。吸弃多余菌液，然后将培养瓶倒置平放在35℃培养箱中，培养24h。
用5m l PBS和3g **玻璃珠洗脱细胞瓶中的菌体，用PBS调整浓度至1×108cf u/ml～5×108cfu/ml，然后加入3%的牛血清白蛋白。
（4）染菌载体的制备：每片载体接种20μl菌悬液，放回培养皿中，加盖，于35℃*2℃在培养箱中干燥20min。
（5）测试样品的制备：至少在实验开始前20 m in，将盛有265ml硬水的玻璃罐在水浴箱中恒温至测试温度(25℃*1℃)。加入被测试样品混合溶解。
2.1.8.6.4 试验步骤
（1）将两片染菌载体放入转动支架的第6和7层布条之间，将第3片放入第7和8层布条之间。
（2）以 无 菌 操 作 方 式 将 转 动 单 元（ 支 架、 布 条 和 染 均 载 体）放 入 含 有 测 试 产 品 的 玻璃 罐 中 ，加 盖 。
（3）玻璃 罐 固 定 在 摇 床 上 ，滚 动 旋 转 洗 涤20 m i n ，取 下 玻 璃 罐。
（4）以无菌操作方式，取出转动单元，取出3片染菌载体，放入到含有3 0ml中和剂（在测试**产品的**作用时，不加中和剂，只加入含0.5%吐温80的PBS）的试管中，在振荡器中混合10s。然后振打200次，用PBS做10倍系列稀释，并选择适宜稀释度样液接种TSA平板。每个稀释度接种两个平板。
（5）对 照 组 除 用 0.5 %（ V/V） 的 吐 温8 0替 代 测 试 产 品 外 ，其 它 实 验 条 件 和 步 骤 均与 试 验 组 相 同 。
（6）菌 数 对 照: 将3片染 菌 载 体 加 入含 有3 0 ml 0.5 % 吐 温8 0 的 PBS试 管 中 ，在 振 荡器 振 荡10s ，然 后 振 打2 0 0次 ，用PBS做10倍 系 列 稀 释 ，并 取 适 宜 稀 释 度 样 液1.0ml，以 倾 注法 接 种TSA平 板，每 个 稀 释 度 接 种 两 个 平 板。
（7）将 试 验 组、对照 组 和 菌 数 对 照 组 平 板 倒 置 于3 5 ℃ ± 2℃ 培 养 箱 中 ，培 养4 8 h ±4 h，计 数 菌 落 数 。
（8）结 果计 算
试 验 重 复3次 。 记 录 并 计 算 测 试 样 品 的 细 菌 总 数 的 对 数 值 ， 求 其 平 均 值.。
2.1.8.6.5 评 价 规 定
按2.1.7.4.3（7）的 方 法 计 算 抑 菌 率 ，抑 菌 率 达 到5 0 % 可 判为 该 抗 菌 合 格 ；
按 2.1.1.7.4（6）方 法 计 算 杀 灭 对 数 值。杀 灭 对 数 值 ≥3.00，可 判 定 该 产 品为 消 毒 合格 。
2.1.8.6.6注意事项
（1）将旋转单元放入玻璃罐后应将盖子盖紧，以防转动时漏水。
（2）试验时应严格无菌操作，以防止杂菌污染。
2.1.8.7 振荡烧瓶试验
2.1.8.7.1 原理
在液体中通过快速长时间振荡，增加微生物与抗（抑）菌产品内抑菌剂的接触以显示其抑菌作用。试验根据抑菌率大小判断其是否具有抑菌能力。本试验适用于对非溶出性抗（抑）菌织物的鉴定。
2.1.8.7.2 试验器材
(1)金黄色葡萄球菌 (ATCC 6538)、大肠杆菌(8099)、白色*** (ATCC 10231)菌悬液的制备方法见2.1.1.2。根据抑菌剂特定用途也可用其他菌悬液。
(2)磷酸盐缓冲液(PBS，0.03mol/L，pH值7.2～7.4)
(3)振荡摇床 (300r/min)
(4)三角烧瓶
(5)营养琼脂培养基、胰 蛋 白 胨大 豆琼 脂培 养 基（TSA）与沙堡琼脂培养基
2.1.8.7.3 操作程序
（1）将**物品剪切成10mm×10mm样片，称取0.75g分装包好。
（2）将0.75g样片放入250ml的三角烧瓶中，分别加入70ml PBS和5ml菌悬液，使菌悬液在PBS中的浓度为1×104cfu/ml～5×104 cfu/ml。
（3）将三角烧瓶固定于振荡摇床上，在作用温度为20℃～25℃的条件下，以300r/min振摇2min。吸取1.0ml用PBS作适当稀释只至10-2，作为试验组震荡前样液。
（4）将0.75g样片放入上述含有70 mlPBS和5ml菌悬液的三角烧瓶中，然后将三角烧瓶固定于振荡摇床上，在作用温度为20℃～25℃的条件下，以300r/min振摇取0.5ml振摇1h。吸取1.0ml样液，或用PBS作适当稀释后作为试验组振荡后样液。
（5）分别吸取振荡前和振荡后样液各1.0ml，以琼脂倾注法接种平皿，每个样液接种两个平皿，按照2.1.1.3规定的方法进行活菌培养计数。
（6）试验同时设阴性对照样片和不加样片组。对照样片组以不含**剂的材质、大小相同的样片代替**样片外，其它操作程序均与试验组相同。不加样片组分别取5ml菌悬液和70mlPBS加入250ml三角烧瓶中，混匀，分别于振荡前和振荡后1h，各取1.0ml菌悬液与PBS的混合液做适当稀释。按2.1.1.2.3法进行活菌培养计数。
（7）试验重复3次，按下列公式计算抑菌率
2.1.7.7.4 评价规定
(1)不加样片组活菌计数在1×104cfu/ml～5×104cfu/ml，且样本振荡前后平均菌落数差值在 10%以内，试验有效。
(2)试验样片抑菌率与对照样片抑菌率的差值 > 26%，即可认定该样片具有**作用。
2.1.8.7.5 注意事项
(1) 振荡前须将振荡摇床上的三角烧瓶固定牢，以免碰破。
(2) 试验中，在实验误差允许的范围内，如果试验组和对照组出现振荡后菌落数高于振荡前菌落数的情况，其抑菌率可按“0”计算。
2.1.8.8 浸渍试验
2.1.8.8.1原理
将试样和对照织物分别放于三角瓶中，用含有肉汤培养基的试验菌悬液接种于试样和对照织物上，经培养后，分别将培养前后试样上的**洗下，测定**的数量，可计算出试样上**减少的百分率。该方法适用于溶出性**织物的检测。
2.1.8.8.2试验器材
(1)试验菌株 金黄色葡萄球菌ATCC 6538
(2)试样 将**织物剪成直径为5cm的圆形样片
(3)肉汤培养基
(4)胰蛋白胨大豆琼脂培养基
(5)0.03mol/L磷酸盐缓冲液 pH7.2
(6)恒温水浴箱
(7)37℃培养箱
2.1.8.8.3试样和菌悬液的制备
（1）试样的制备：
距布边10cm以上，离布端1m以上，剪直径为5cm的圆形试样若干，（需用试样数量要根据纤维类别及织物织法而定，以能吸收1ml菌液且三角瓶中不留残液为度）。另剪取对照织物若干，取3份试样和2份对照织物分别装于三角瓶中，该好瓶口，121℃15min**备用。
(2) 菌悬液的制备
用接种环将保存的菌种以划线法接种到营养琼脂平皿上，在37℃培养箱中培养24h，取平皿上典型的菌落移种到肉汤培养基的三角瓶中，在37℃条件下培养24h，用肉汤进行系列稀释，使菌悬液的含量为1×105cfu/ml～5×105cfu/ml。
2.1.8.8.4试验步骤
(1) 分别取1ml菌悬液加在三个准备好的三角瓶内的织物上，确保其均匀分布，且三角瓶中不留多余液，封好瓶口，以防蒸发。
(2)分别在一个盛有试样和对照织物的三角瓶中加入100ml缓冲液，剧烈摇晃1min洗涤**，取1ml做10倍系列稀释，选适当稀释度以倾注法接种平皿，作为“0”接触时间样品和对照织物上的**数。
(3)将另一个装有接种试样的三角瓶在37℃培养箱中培养20h±2h，然后加入100ml缓冲液，剧烈摇晃1min洗涤**，取1ml做10倍系列稀释，选适当稀释度以倾注法接种平皿，作为试验组。
(4)阴性对照 试样不接种菌悬液，在“0”接触时间加入100ml缓冲液，剧烈摇晃1min取样，接种平皿。
(5)阳性对照另取1个装有对照织物的三角烧瓶，接种1ml菌悬液后，在37℃培养箱中培养20h±2h，然后加入100ml缓冲液，剧烈摇晃1min洗涤**，取1ml做10倍系列稀释，选适当稀释度以倾注法接种平皿。
(6)将阴性和阳性对照样本与试验组样本一并放入37℃培养箱中，培养48h，计数菌落数。
(7)试验重复3次。
(8)结果计算
B或C或(B＋C)/2-A
抑菌率（%）= ×100
B或C或(B＋C)/2
A- 试验组试样上的**数；
B- “0”接触时间试样上的**数；
C- “0”接触时间对照织物上的**数；
如果“B”和“C”差别较大时，取较大值；如果“B”和“C”差别不大时，取平均值。
2.1.8.8.5评判规定
（1）“0”接触时间对照织物的平均菌落数应在1×103cfu/ml～5×103cfu/ml。
（2）阴性对照应无菌生长，阳性对照菌数比0接触时间的菌数明显增加。
（3）各次试验的抑菌率均≥50%，即可认定该样片具有**作用。
2.1.8.8.6 注意事项
（1）对织物进行染菌操作时，应确保其均匀分布，且三角瓶中不沾染或存留多余菌液。
（2）三角瓶内的织物染菌后，应将瓶口封好，以防液体蒸发，造成**死亡。
2.1.8.9 奎因试验
2.1.8.9.1原理
将菌悬液直接滴于抗（抑）菌产品上，覆盖以培养基，加强微生物和抑菌剂的接触以显示其抑菌作用。试验根据抑菌率大小判断其是否具有抑菌能力。本试验适用于对非溶出性硬质表面抗（抑）菌产品的鉴定。
2.1.8.9.2 试验器材
（1）金黄色葡萄球菌 (ATCC 6538)、大肠杆菌(8099)、白色*** (ATCC 10231)菌悬液(见2.1.1.2)。根据抑菌剂特定用途所用的其他菌悬液。
（2）磷酸盐缓冲液(PBS，0.03mol/L，pH为7.2～7.4)。
（3）营养琼脂培养基、沙堡琼脂培养基和半固体营养琼脂培养基。
2.1.8.9.3 操作程序
（1）倾注琼脂培养基平板。
（2）菌悬液的制备按2.1.1.2进行。将菌悬液稀释成105cfu/ml～106cfu/ml作为试验用菌悬液。
（3）将测试的抗（抑）菌产品剪切成50mm×50mm大小样片，用75%乙醇**后，逐片平放于无菌平皿内，取0.1ml试验用菌悬液滴染于样片中央，涂匀，使菌液与样片边沿留有5mm的距离。置37℃温箱内干燥30min～60min，作为染菌的抗（抑）菌样片备用。
（4）将染菌的抗（抑）菌样片有菌面朝上平贴于无菌琼脂平板表面。
（5）用半固体琼脂3.0 ml～5.0ml，均匀覆盖于染菌样片表面，置37℃温箱培养18h～24h，观察结果。
（6）另将试验用菌悬液作适当稀释，使其浓度为1×103 cfu/ml～2×103cfu/ml，取其0.1ml滴染于不含抗（抑）菌剂的同质样片上，涂匀，与试验组样片做同样处理后，同放一平板内，用半固体琼脂覆盖培养，作为阳性对照。
（7）试验同时，试验菌悬液作活菌计数，并观察不含抗（抑）菌剂的对照样片受试菌的培养计数。
（8）试验重复3次。
（9）按下列公式计算抑菌率。
2.1.8.9.4 评价规定
阳性对照生长菌数≥100cfu/片，抑菌率≥99.00%，可判为有抑菌作用。
2.1.8.9.5 注意事项
（1）样片滴染菌悬液时，勿溢出片外。
（2）覆盖用琼脂的温度以在45℃～50℃间为宜，不可过热。
2.1.8.1 目的
测定抗（抑）菌产品对**和**的抗（抑）菌作用。
常使用的方法有抑菌环试验、*小抑制浓度测定试验、滞 留 抑 菌 效 果 测 定 试 验、洗衣粉**效果测定试验、振荡烧瓶试验、浸渍试验与奎因试验，可视情况选用。
2.1.8.2 抑菌环试验
2.1.8.2.1 原理
利用抑菌剂不断溶解经琼脂扩散形成不同浓度梯度，以显示其抑菌作用。试验通过抑菌环大小以判断其是否具有抑菌能力。本试验适用于抑菌剂与溶出性抗（抑）菌产品的鉴定。
2.1.8.2.2 试验器材
(1)金黄色葡萄球菌 (ATCC 6538)、大肠杆菌(8099)、白色*** (ATCC 10231) 菌悬液(见2.1.1.2)及根据抑菌剂特定用途所用的其他菌悬液。
(2)抑菌剂载体 (5 mm 直径园形新华一号定性滤纸片，经压力蒸汽**处理后，置 120℃ 烤干2h，保存备用)。
(3)活菌培养计数所需器材(见2.1.1.3)。
(4)微量移液器(5μl～50μl，可调式)。
(5)游标卡尺。
(6)营养琼脂培养基、胰蛋白胨大豆琼脂培养基与沙堡琼脂培养基
2.1.8.2.3 操作程序
(1)抑菌片的制备:对液体抑菌剂，取无菌并干燥的滤纸片。每片滴加实际使用浓度抑菌剂溶液20μl，然后将滤纸片平放于清洁的无菌平皿内，开盖置温箱(37℃) 中烤干，或置室温下自然干燥后备用。
溶出性抗（抑）菌产品，可直接制成直径为 5mm，厚不超过 4mm圆片(块)，每 4 片(块) 一组。
(2)阴性对照样片的制备:取无菌干燥滤纸片，每片滴加无菌蒸馏水 20μl，干燥后备用。
溶出性抗（抑）菌产品的阴性对照样本，应取同种材质不含抑菌成份的样品，制成与试验组大小相同的样片(块)。
(3)试验菌的接种:用无菌棉拭子蘸取浓度为 5×105cfu/ml～5×106cfu/ml试验菌悬液，在营养琼脂培养基平板表面均匀涂抹3次。每涂抹1次，平板应转动 60°，*后将棉拭子绕平板边缘涂抹一周。盖好平皿，置室温干燥5min。
(4)抑菌剂样片贴放:每次试验贴放1个染菌平板，每个平板贴放4片试验样片，1 片阴性对照样片，共 5片。用无菌镊子取样片贴放于平板表面。各样片中心之间相距 25mm以上，与平板的周缘相距 15mm以上。贴放好后，用无菌镊子轻压样片，使其紧贴于平板表面。盖好平皿，置37℃温箱，培养16h～18h观察结果。用游标卡尺测量抑菌环的直径 (包括贴片) 并记录。试验重复3次。
测量抑菌环时，应选均匀而完全无菌生长的抑菌环进行。 测量其直径应以抑菌环外沿为界。
2.1.8.2.4 评价规定
(1)抑菌作用的判断:
抑菌环直径大于 7mm 者，判为有抑菌作用。
抑菌环直径小于或等于 7mm 者，判为无抑菌作用。
(2) 3 次重复试验均有抑菌作用结果者，判为合格。
(3)阴性对照组应无抑菌环产生。否则试验无效。
2.1.8.2.5 注意事项
(1)每次试验均应设置阴性对照，不可省略。在报告中亦必须将对照组的结果列出。
(2)接种用**悬液的浓度应符合要求。浓度过低，接种菌量少，抑菌环常因之增大; 浓度过高，接种量过多，抑菌环则可减小。
(3)应保持琼脂浓度的准确性，否则可影响抑菌环的大小。
(4)培养时间不得超过 18h。培养过久，部分**可恢复生长，抑菌环变小。
(5)抑菌环直径可受抑菌剂的量、抑菌性能和干湿度影响。故抑菌剂滤纸片应在试验当天制备。
2.1.8.3 *小抑菌浓度测定试验（琼脂稀释法）
2.1.8.3.1原理
本试验采用琼脂稀释法将不同浓度的抑菌剂混合溶解在琼脂培养基中，然后点种**，通过**的生长与否，确定抗（抑）菌物质抑制受试菌生长的*低浓度，即*小抑菌浓度(MinimalInhibitory Concentration，MIC)。本方法适用于不溶性抗（抑）菌产品。
2.1.8.3.2 试验器材
（1）菌株
金黄色葡萄球菌 ATCC 6538 ，大肠杆菌 8099或ATCC 11229。
可根据抑菌剂的用途，选择特定的菌株。
（2）水解酪蛋白琼脂培养基（MH），称取38gMH琼脂培养基，溶于1000ml水中，加热至沸腾溶解，然后121℃高压**15min，置45℃～50℃水浴备用，此培养基将用于对照试验。
（3）0.03mol/L磷酸盐缓冲液pH7.2。
（4）加样器（1μl～10μl）。
（5）45℃～50℃水浴恒温箱。
（6）吸管、试管、平皿。
（7）37℃培养箱。
2.1.8.3.3 操作步骤
（1）抗（抑）菌溶液的配制：以无菌操作取5ml或5g（固体研磨后）样品，放入45ml**磷酸缓冲液中，充分震荡溶解，配成10%的均匀分散的溶液或悬液。
（2）含**剂培养基配制：将已配成10%的抗（抑）菌溶液或悬液用PBS做对倍系列稀释成不同浓度的受试液，置45℃～50℃水浴恒温备用。
（3）双倍浓度培养基配制：称取76gMH琼脂培养基，溶于1000ml水中。加热至沸腾溶解。然后121℃压力蒸汽**15min，置45℃～50℃水浴备用。此培养基将用于稀释抗（抑）菌溶液或悬液。
（4）含抗（抑）菌液培养基的配制：分别取10ml系列稀释的**液加入平皿内。将在45℃～50℃水浴中的双倍MH琼脂培养基10ml，加入平皿内，边加边摇晃平板，使抗（抑）菌液和培养基充分混匀，待凝固后备用。
（5）用加样器取1μl～2μl（含菌量约为107cfu/ml）菌悬液点种于含抗（抑）菌液培养基的平皿，接种后所形成的菌液圈直径约5mm～8mm（每个点菌量约为104cfu）。
（6）以同样方法接种不含抗（抑）菌成分的MH琼脂平板，作为阳性对照。
（7）将接种后的平板放置35℃培养箱中，倒置培养18h～24h，观察结果。
2.1.8.3.4 评判规定
菌落生长被完全抑制的*低抗（抑）菌液浓度为该样品对受试菌的MIC。单一菌落生长可忽略不计。
2.1.8.3.5 注意事项
（1）接种时，应由低抗（抑）菌剂浓度向高浓度平板依次接种，*后接种对照平板。
（2）为了保证平板受热均匀，培养时平板堆放不得超过4个。
2.1.8.4 *小抑菌浓度测定试验（营养肉汤稀释法）
2.1.8.4.1原理
本试验将不同浓度的抑菌剂混合溶解于营养肉汤培养基中，然后接种**，通过**的生长与否，确定抗（抑）菌剂抑制受试菌生长的*低浓度，即*小抑菌浓度(MinimalInhibitory Concentration，MIC)。本方法式用于可溶性抑菌产品。
2.1.8.4.2 试验器材
（1）试验菌株：金黄色葡萄球菌 ATCC 6538 ，大肠杆菌 8099或ATCC 11229。
可根据抑菌剂的用途，选择特定的菌株。
（2）营养肉汤培养基，见附录A。
（3）稀释液，见附录A。
（4）吸管、试管
（5）37℃培养箱。
2.1.8.4.3 操作步骤
（1）按 2.1.1.2 所示方法制备的金黄色葡萄球菌、大肠杆菌悬液
（2）含**剂培养基配制：将抗（抑）菌溶液用蒸馏水做对倍系列稀释成不同浓度的受试液，取各稀释度受试液2.5ml加入到含2.5ml双倍浓度营养肉汤的试管中。
（3）取0.1ml含菌量约为108cfu/ml菌悬液接种于含抗（抑）菌剂的营养肉汤的试管中，作为试验组样本。
（4）以同样方法接种不含抗（抑）菌剂的营养肉汤的试管中，作为阳性对照组样本。
（5）取2支含营养肉汤的试管中，作为阴性对照组样本。
（6）将试验组样本、阳性对照组样本及阴性对照组样本放置37℃培养箱中，培养48h，观察结果。
（7）试验中应将试验用菌悬液进行活菌培养计数，其作用浓度应为5×105cfu/ml～5×106cfu/ml。
2.1.8.4.4 评判规定
当阳性对照管有**生长(混浊)，阴性对照管无菌生长(透明)，试验用菌悬液的作用浓度为5×105cfu/ml～5×106cfu/ml时，试验组无菌生长的*高稀释度所对应的抗（抑）菌剂浓度，为该样品对受试菌的MIC。
2.1.8.4.5 注意事项
接种时，应由低抗（抑）菌剂浓度向高浓度依次接种，
2.1.8.5 滞 留 抑 菌 效果 试 验
2.1.8.5.1 原 理
本试验通过模拟适合**生长、繁殖和可能产生感染的皮肤条件下，使用随机性、双盲的、配对比较的方法检测抗（抑）菌香皂和**沐浴露12h或24h的滞留抑菌效果。
2.1.8.5.2试验器材
(1) 试验产品: 试验品为25套按顺序编号的香皂样品。每套2块，一块为测试样品皂，另一块为不含抑菌剂的对照皂。
(2) 不含抑菌剂的洗发水 25瓶（200ml/瓶）
(3) 不含抑菌剂的香皂 25块
(4) 胰蛋白酶大豆肉汤培养基(TSB)
(5) 胰蛋白酶大豆琼脂培养基（TSA）
(6) 0.075mol/L的磷酸盐缓冲液
(7) 70%酒精
(8) 恒温箱
(9) 金属筒 （直径2.2cm、高度3cm）
(10) 一次性接种环（直径4mm）
(11) 小塑料碗（直径2.2cm，高2.5mm，）
(12) 胶带（Darapore，3M公司生产）
(13) 尼龙刮菌棒
(14) Triton-X 100 500ml
(15) 外用***软膏(例如:百多邦莫匹罗星软膏)
(16) 玻璃弯棒
(17) 羊血
(18) 金黄色葡萄球菌ATCC27217（此株金黄色葡萄球菌是一种低毒性、对青霉素敏感、对四环素有抗药性的色素株，曾用于许多试验研究，没有任何严重副作用）。
(19) 皮肤**剂
2.1.8.5.3 试验步骤
(1)调整阶段
试验开始前7d至14d，受试者使用不含抗（抑）菌成分的香皂、洗发水和沐浴液进行日常的洗手、洗澡。此阶段持续至少7d，但不超过14d。
(2)清洗阶段
清洗阶段共3d，受试者每天用抑菌皂清洗一侧前臂，用对照皂清洗另一侧前臂，清洗过程如下:
1）先清洗左臂，用流动水（水温应保持在35℃～37℃）打湿前臂内侧；
2）用香皂从手腕至臂肘上下摩擦15s；
3）用手在涂有香皂的手臂上上下摩擦泡沫45s；
4）用流动的清水冲洗前臂15s，不要搓擦；
5）用纸巾沾干前臂. 不要搓擦；
6）重复以上步骤清洗右臂；
7）按上面所描述的试验步骤每日清洗前臂3次，每次间隔至少一个小时，在*后一次清洗之后，需记录好时间，在12h之后，进行滞留效果检测。在第9次清洗前臂以后，受试者不能洗澡、淋浴或洗净前臂，直到试验结束。用品包的标签上注明洗哪只手臂。清洗前后的两块香皂的重量及受试者完成清洗的情况，须记录下来。
（3）试验阶段
清洗阶段的第四天(*后一次清洗后12h或24h)，将在受试者每只前臂上划出一个试验区，对试验区进行接种、封包和回收存活**，具体步骤如下:
1）将金黄色葡萄球菌（ATCC27217）连续转种3代，取第3代培养物接种于胰蛋白大豆肉汤培养基（TSB）中，在35℃±2℃的条件下培养20h±2h。然后用胰蛋白酶大豆肉汤适当稀释菌悬液，使菌悬液浓度约为108cfu/ml～109cfu/ml。
2）**接种:在受试者的每只前臂中间部位（不要在手腕和肘皱褶处），用带有印墨直径为3.0cm的玻璃量筒扣在皮肤上，划分出一个试验区。使用加样器取10μl上述菌悬液，接种于前臂试验区（菌落数为106cfu/试验区～107cfu/试验区），用一次性接种环，把接种物涂成一圆形，使其与试验区边缘应有4mm～5mm的距离。
3）封包:**接种后立即用小塑料碗扣于染菌区上面 ，再用胶带将小塑料碗固定在皮肤上，记录封包的时间。
4）回收存活**：接种后2h±5min对前臂上接种的区域进行取样。将金属筒放置于试验区中间部位，不要接触到盖有印墨的边缘。将1ml含0.1%triton-X100的0.075mol/L磷酸盐缓冲液吸移至金属筒内，用尼龙刮菌棒刮洗金属筒罩住区域内的皮肤60s，将筒内液体吸移至试管内，再加1ml含0.1%tritonX-100的0.075mol/L磷酸盐缓冲液，对该区域内的皮肤进行第2次刮洗30s，将第2次擦洗的液体，注入含第1次刮洗液体的试管中。
5）实验区试验后的**处理:一个实验区采样之后，需用70%的酒精对实验区进行**。然后对另一个实验区以同样方法进行采样，采样结束后，先用70%的酒精对实验区进行**，然后用皮肤**剂对两只前臂进行**处理，处理后清水冲洗，擦干，再涂少量的***软膏。
6）平皿接种与培养:对每一个取样进行平皿接种，以0.0375mol/L磷酸盐缓冲液对样品进行10倍系列稀释，选适当稀释度取0.1ml接种于2个含5%羊血的TSA平板表面，用玻璃弯棒涂匀，在35℃±2℃的培养箱中培养48h±4h，计数菌落数。
7）抑菌率的计算
抑菌率=[ （对照平均菌落数－试验平均菌落数）/ 对照平均菌落数] ×100%
2.1.8.5.4 判定标准
试验不得少于16人次，抑菌率≥50%，可判定该产品在规定的时间内有滞留抑菌作用。
2.1.8.5.5注意事项
（1）受试者录用标准
①年龄介于18岁至65岁的男性或女性；
②受试者应身体健康；
③前臂应完好无损且没有皮肤病及其它皮肤问题；
④同意在整个试验期间，避免使用抗（抑）菌洗液和乳膏、局部类固醇类药和全身或局部使用***，除非因为并发病症医生要求使用；
⑤同意在清洗阶段使用非**香皂或洗液洗澡和淋浴，但受试者不能清洗前臂。在第9次洗完前臂以后，不洗澡，淋浴或洗净前臂，直到试验结束。
（2）排除受试者的标准 如果受试者有下列情况之一，不能被录用参加试验
① 同时参加另外一个临床试验
② 在过去的14d中，参加过任何一种形式的关于清洁手或手臂的试验
③ 对香皂、去污剂、香水或青霉素过敏
④ 怀孕妇女
⑤ 诊断患有糖尿病、肝炎、艾滋病（HIV阳性）、器官移植者，
（3）其它试验限制
① 受试者不得使用其它清洁用品；
② 受试者应避免洗热水盆浴和游泳；
③ 受试者应避免接触未干的油漆、涂料或者其它溶剂；
④ 受试者应避免在手腕处和前臂上喷洒香水。
（4）在试验完成后的48h～72h内，需检查前臂上有无小**、水疱，隆起的红色痒疱。出现这些情况的受试者应尽快通知检验单位。
2.1.8.6洗衣粉抗（抑）菌效果鉴定方法8
2.1.8.6.1 原 理
本 方 法 通过 模 拟 洗 衣 机 的 洗 衣 过 程 ，检 测 抗 （抑）菌 洗 衣 粉（剂）的 抗 菌 作 用 。
2.1.8.6.2 试 验 器 材
（1） 试 验 菌 株
大 肠 杆 菌 A T C C 1 1 2 2 9，金 黄 色 葡 萄 球 菌 A T C C 6 5 3 8。
（2）培 养 基
营 养 琼 脂（ 琼 脂 含 量 为1.5%）
营养琼脂A：在营养琼脂中另加入1.5 %的琼脂。
TSA营养肉汤。
（3）牛 血 清 白 蛋 白（ 过 滤 除 菌）
（4）烷 基 酚 聚 氧 乙 烯 醚 （Tergitol ）
（5）碳 酸 钠
（6）标准 硬 水
（7）非 离 子 浸 湿 剂 ： 见 测 试 棉布 制 备 部 分
（8）冲 洗 溶 液
（9） 中 和 剂（ 经 中 和 剂 鉴 定 试 验 合 格 ）
（10） 吐 温80 ( 过 滤 除 菌 )
（11）去 离 子 水 或 蒸 馏 水灭 菌
(12)不锈钢转轴（由 一 条 直 径0.16cm 不 锈 钢 丝 制 成，如 图2-2）
俯 视 图 侧 面 图
图2-2 缠 绕 测 试 布 条 的 不 锈 钢 转 轴
（13）有 金 属 螺 盖 的 玻 璃 罐（ 容 积 为470 ml ，可 高 压 灭 菌 ， 并 可 放 入 转 轴 的 广 口罐），将 罐 口 覆 盖 牛 皮 纸 ，加 盖 ，于121*C灭 菌2 5 min 备 用。
（14）转 动 速 度 为45 r/ min～6 0 r/ min 的 滚 动 摇 床
（15）可 调 恒 温 水 浴 箱
（16）吸 管 ( 1ml， 5ml，和 10 ml)
（17）培 养 皿
（18）铺 有 滤 纸 的 玻 璃 培 养 皿。
（29）菌 种 保 存 管
（20）细 菌 培 养 箱
（21）涡 流 振 荡 器
（22）细 菌 比 浊 仪
（23）棉布（32支纱/cm×32支纱/cm平织棉布）
（24）别 针、镊 子、无 菌 手 套 、3mm～5 mm玻 璃 珠 、秒 表、载 体 布片2.5cm×3.75cm ，见 测 试棉布 准 备。
2.1.8.6.3实 验 准 备
（1）测 试棉布的制备
①非 离 子 浸 润 剂 的 制 备：取5g烷 基 酚 聚 氧 乙 烯 醚 ，5 g 碳 酸 钠 加 入 到1 L 去 离 子 水 中。
②洗 涤 液 的 制 备 ：1.5g 非 离 子 浸 润 剂 ，1.5g 碳 酸 钠 ，加 入 到3 L 去 离 子 水 中。
将 大 约3 0 0 g 测 试 棉 布 加 入3 L 洗 涤 溶 液 。 加 热 煮 沸 1h 。 取 出 棉 布 在 煮 沸 的去 离 子 水 中 清 洗 5 m i n 。 然 后 放 入 凉 去 离 子 水 中 5 min 。 以 去 除 残 留 的 浸 润剂 。 然 后 将棉布 晾 干。
（2）测 试 棉 布 和 转 动 支 架 的 准 备 ：取 处 理 过 的 棉 布，剪 成5 cm 宽 ，重 量 为15g *1 g的布 条，将 其 一 端 插 入 固 定 在 测 试 转 动 支 架 的 水 平 方 向 的 外 边，然 后 在 3 条 水 平 支 架间 以 足 够 的 张 力 缠 绕12个 整 圈 ，将 布 条 的 另 一 端 用 不 锈 钢 别 针 固 定 在 前 一 圈 布 条上 。* 后 以
121℃ 压 力 蒸 汽 灭 菌15 mi n ，备 用 。
（3） 细 菌 悬 液 的 制 备 ：取0. 5 ml营 养 肉 汤 冻 干 的 菌 种 溶 解，接 种于含10 ml 的 营 养 肉汤 的 试 管 ，于3 5 *C * 2 *C培 养2 4 h。 然 后， 振 荡 混 合 均 匀 。用10μl 接 种 环 在 营养 琼 脂 平 板 上 划 线 ，置 于35 *C * 2*C培 养2 4h。 然 后 ，从 平 板 上 挑 取 单 个 菌 落 种入 菌 种 保 藏 管 中 ，上 下 摇 动10次 ，吸 弃 多 余 液 体 ， 置－8 0 *C冰 箱 保 存。 试 验 前 ，从菌 种 保 藏 管 中 取 出 1粒 带 菌 小 颗 粒 放 入 营 养 琼 脂 斜 面 ，晃 动 斜 面 。 将 斜 面 至3 5℃培 养2 4 h 。 每 天 转 种1 次 ，连 续 传 3 代 。
第四天，用5 m l P B S洗脱斜面上的菌苔，取0.5 ml加入到含9.5 ml PBS的试管中，混匀，取1 ml～2ml加入含有20 ml营养琼脂B的细胞培养瓶中，晃动培养瓶使菌液覆盖整个琼脂表面。吸弃多余菌液，然后将培养瓶倒置平放在35℃培养箱中，培养24h。
用5m l PBS和3g **玻璃珠洗脱细胞瓶中的菌体，用PBS调整浓度至1×108cf u/ml～5×108cfu/ml，然后加入3%的牛血清白蛋白。
（4）染菌载体的制备：每片载体接种20μl菌悬液，放回培养皿中，加盖，于35℃*2℃在培养箱中干燥20min。
（5）测试样品的制备：至少在实验开始前20 m in，将盛有265ml硬水的玻璃罐在水浴箱中恒温至测试温度(25℃*1℃)。加入被测试样品混合溶解。
2.1.8.6.4 试验步骤
（1）将两片染菌载体放入转动支架的第6和7层布条之间，将第3片放入第7和8层布条之间。
（2）以 无 菌 操 作 方 式 将 转 动 单 元（ 支 架、 布 条 和 染 均 载 体）放 入 含 有 测 试 产 品 的 玻璃 罐 中 ，加 盖 。
（3）玻璃 罐 固 定 在 摇 床 上 ，滚 动 旋 转 洗 涤20 m i n ，取 下 玻 璃 罐。
（4）以无菌操作方式，取出转动单元，取出3片染菌载体，放入到含有3 0ml中和剂（在测试**产品的**作用时，不加中和剂，只加入含0.5%吐温80的PBS）的试管中，在振荡器中混合10s。然后振打200次，用PBS做10倍系列稀释，并选择适宜稀释度样液接种TSA平板。每个稀释度接种两个平板。
（5）对 照 组 除 用 0.5 %（ V/V） 的 吐 温8 0替 代 测 试 产 品 外 ，其 它 实 验 条 件 和 步 骤 均与 试 验 组 相 同 。
（6）菌 数 对 照: 将3片染 菌 载 体 加 入含 有3 0 ml 0.5 % 吐 温8 0 的 PBS试 管 中 ，在 振 荡器 振 荡10s ，然 后 振 打2 0 0次 ，用PBS做10倍 系 列 稀 释 ，并 取 适 宜 稀 释 度 样 液1.0ml，以 倾 注法 接 种TSA平 板，每 个 稀 释 度 接 种 两 个 平 板。
（7）将 试 验 组、对照 组 和 菌 数 对 照 组 平 板 倒 置 于3 5 ℃ ± 2℃ 培 养 箱 中 ，培 养4 8 h ±4 h，计 数 菌 落 数 。
（8）结 果计 算
试 验 重 复3次 。 记 录 并 计 算 测 试 样 品 的 细 菌 总 数 的 对 数 值 ， 求 其 平 均 值.。
2.1.8.6.5 评 价 规 定
按2.1.7.4.3（7）的 方 法 计 算 抑 菌 率 ，抑 菌 率 达 到5 0 % 可 判为 该 抗 菌 合 格 ；
按 2.1.1.7.4（6）方 法 计 算 杀 灭 对 数 值。杀 灭 对 数 值 ≥3.00，可 判 定 该 产 品为 消 毒 合格 。
2.1.8.6.6注意事项
（1）将旋转单元放入玻璃罐后应将盖子盖紧，以防转动时漏水。
（2）试验时应严格无菌操作，以防止杂菌污染。
2.1.8.7 振荡烧瓶试验
2.1.8.7.1 原理
在液体中通过快速长时间振荡，增加微生物与抗（抑）菌产品内抑菌剂的接触以显示其抑菌作用。试验根据抑菌率大小判断其是否具有抑菌能力。本试验适用于对非溶出性抗（抑）菌织物的鉴定。
2.1.8.7.2 试验器材
(1)金黄色葡萄球菌 (ATCC 6538)、大肠杆菌(8099)、白色*** (ATCC 10231)菌悬液的制备方法见2.1.1.2。根据抑菌剂特定用途也可用其他菌悬液。
(2)磷酸盐缓冲液(PBS，0.03mol/L，pH值7.2～7.4)
(3)振荡摇床 (300r/min)
(4)三角烧瓶
(5)营养琼脂培养基、胰 蛋 白 胨大 豆琼 脂培 养 基（TSA）与沙堡琼脂培养基
2.1.8.7.3 操作程序
（1）将**物品剪切成10mm×10mm样片，称取0.75g分装包好。
（2）将0.75g样片放入250ml的三角烧瓶中，分别加入70ml PBS和5ml菌悬液，使菌悬液在PBS中的浓度为1×104cfu/ml～5×104 cfu/ml。
（3）将三角烧瓶固定于振荡摇床上，在作用温度为20℃～25℃的条件下，以300r/min振摇2min。吸取1.0ml用PBS作适当稀释只至10-2，作为试验组震荡前样液。
（4）将0.75g样片放入上述含有70 mlPBS和5ml菌悬液的三角烧瓶中，然后将三角烧瓶固定于振荡摇床上，在作用温度为20℃～25℃的条件下，以300r/min振摇取0.5ml振摇1h。吸取1.0ml样液，或用PBS作适当稀释后作为试验组振荡后样液。
（5）分别吸取振荡前和振荡后样液各1.0ml，以琼脂倾注法接种平皿，每个样液接种两个平皿，按照2.1.1.3规定的方法进行活菌培养计数。
（6）试验同时设阴性对照样片和不加样片组。对照样片组以不含**剂的材质、大小相同的样片代替**样片外，其它操作程序均与试验组相同。不加样片组分别取5ml菌悬液和70mlPBS加入250ml三角烧瓶中，混匀，分别于振荡前和振荡后1h，各取1.0ml菌悬液与PBS的混合液做适当稀释。按2.1.1.2.3法进行活菌培养计数。
（7）试验重复3次，按下列公式计算抑菌率
2.1.7.7.4 评价规定
(1)不加样片组活菌计数在1×104cfu/ml～5×104cfu/ml，且样本振荡前后平均菌落数差值在 10%以内，试验有效。
(2)试验样片抑菌率与对照样片抑菌率的差值 > 26%，即可认定该样片具有**作用。
2.1.8.7.5 注意事项
(1) 振荡前须将振荡摇床上的三角烧瓶固定牢，以免碰破。
(2) 试验中，在实验误差允许的范围内，如果试验组和对照组出现振荡后菌落数高于振荡前菌落数的情况，其抑菌率可按“0”计算。
2.1.8.8 浸渍试验
2.1.8.8.1原理
将试样和对照织物分别放于三角瓶中，用含有肉汤培养基的试验菌悬液接种于试样和对照织物上，经培养后，分别将培养前后试样上的**洗下，测定**的数量，可计算出试样上**减少的百分率。该方法适用于溶出性**织物的检测。
2.1.8.8.2试验器材
(1)试验菌株 金黄色葡萄球菌ATCC 6538
(2)试样 将**织物剪成直径为5cm的圆形样片
(3)肉汤培养基
(4)胰蛋白胨大豆琼脂培养基
(5)0.03mol/L磷酸盐缓冲液 pH7.2
(6)恒温水浴箱
(7)37℃培养箱
2.1.8.8.3试样和菌悬液的制备
（1）试样的制备：
距布边10cm以上，离布端1m以上，剪直径为5cm的圆形试样若干，（需用试样数量要根据纤维类别及织物织法而定，以能吸收1ml菌液且三角瓶中不留残液为度）。另剪取对照织物若干，取3份试样和2份对照织物分别装于三角瓶中，该好瓶口，121℃15min**备用。
(2) 菌悬液的制备
用接种环将保存的菌种以划线法接种到营养琼脂平皿上，在37℃培养箱中培养24h，取平皿上典型的菌落移种到肉汤培养基的三角瓶中，在37℃条件下培养24h，用肉汤进行系列稀释，使菌悬液的含量为1×105cfu/ml～5×105cfu/ml。
2.1.8.8.4试验步骤
(1) 分别取1ml菌悬液加在三个准备好的三角瓶内的织物上，确保其均匀分布，且三角瓶中不留多余液，封好瓶口，以防蒸发。
(2)分别在一个盛有试样和对照织物的三角瓶中加入100ml缓冲液，剧烈摇晃1min洗涤**，取1ml做10倍系列稀释，选适当稀释度以倾注法接种平皿，作为“0”接触时间样品和对照织物上的**数。
(3)将另一个装有接种试样的三角瓶在37℃培养箱中培养20h±2h，然后加入100ml缓冲液，剧烈摇晃1min洗涤**，取1ml做10倍系列稀释，选适当稀释度以倾注法接种平皿，作为试验组。
(4)阴性对照 试样不接种菌悬液，在“0”接触时间加入100ml缓冲液，剧烈摇晃1min取样，接种平皿。
(5)阳性对照另取1个装有对照织物的三角烧瓶，接种1ml菌悬液后，在37℃培养箱中培养20h±2h，然后加入100ml缓冲液，剧烈摇晃1min洗涤**，取1ml做10倍系列稀释，选适当稀释度以倾注法接种平皿。
(6)将阴性和阳性对照样本与试验组样本一并放入37℃培养箱中，培养48h，计数菌落数。
(7)试验重复3次。
(8)结果计算
B或C或(B＋C)/2-A
抑菌率（%）= ×100
B或C或(B＋C)/2
A- 试验组试样上的**数；
B- “0”接触时间试样上的**数；
C- “0”接触时间对照织物上的**数；
如果“B”和“C”差别较大时，取较大值；如果“B”和“C”差别不大时，取平均值。
2.1.8.8.5评判规定
（1）“0”接触时间对照织物的平均菌落数应在1×103cfu/ml～5×103cfu/ml。
（2）阴性对照应无菌生长，阳性对照菌数比0接触时间的菌数明显增加。
（3）各次试验的抑菌率均≥50%，即可认定该样片具有**作用。
2.1.8.8.6 注意事项
（1）对织物进行染菌操作时，应确保其均匀分布，且三角瓶中不沾染或存留多余菌液。
（2）三角瓶内的织物染菌后，应将瓶口封好，以防液体蒸发，造成**死亡。
2.1.8.9 奎因试验
2.1.8.9.1原理
将菌悬液直接滴于抗（抑）菌产品上，覆盖以培养基，加强微生物和抑菌剂的接触以显示其抑菌作用。试验根据抑菌率大小判断其是否具有抑菌能力。本试验适用于对非溶出性硬质表面抗（抑）菌产品的鉴定。
2.1.8.9.2 试验器材
（1）金黄色葡萄球菌 (ATCC 6538)、大肠杆菌(8099)、白色*** (ATCC 10231)菌悬液(见2.1.1.2)。根据抑菌剂特定用途所用的其他菌悬液。
（2）磷酸盐缓冲液(PBS，0.03mol/L，pH为7.2～7.4)。
（3）营养琼脂培养基、沙堡琼脂培养基和半固体营养琼脂培养基。
2.1.8.9.3 操作程序
（1）倾注琼脂培养基平板。
（2）菌悬液的制备按2.1.1.2进行。将菌悬液稀释成105cfu/ml～106cfu/ml作为试验用菌悬液。
（3）将测试的抗（抑）菌产品剪切成50mm×50mm大小样片，用75%乙醇**后，逐片平放于无菌平皿内，取0.1ml试验用菌悬液滴染于样片中央，涂匀，使菌液与样片边沿留有5mm的距离。置37℃温箱内干燥30min～60min，作为染菌的抗（抑）菌样片备用。
（4）将染菌的抗（抑）菌样片有菌面朝上平贴于无菌琼脂平板表面。
（5）用半固体琼脂3.0 ml～5.0ml，均匀覆盖于染菌样片表面，置37℃温箱培养18h～24h，观察结果。
（6）另将试验用菌悬液作适当稀释，使其浓度为1×103 cfu/ml～2×103cfu/ml，取其0.1ml滴染于不含抗（抑）菌剂的同质样片上，涂匀，与试验组样片做同样处理后，同放一平板内，用半固体琼脂覆盖培养，作为阳性对照。
（7）试验同时，试验菌悬液作活菌计数，并观察不含抗（抑）菌剂的对照样片受试菌的培养计数。
（8）试验重复3次。
（9）按下列公式计算抑菌率。
2.1.8.9.4 评价规定
阳性对照生长菌数≥100cfu/片，抑菌率≥99.00%，可判为有抑菌作用。
2.1.8.9.5 注意事项
（1）样片滴染菌悬液时，勿溢出片外。
（2）覆盖用琼脂的温度以在45℃～50℃间为宜，不可过热。
